各グループの total RNA 水溶液をアガロースゲルで電気泳動した。M のレーンで泳動したマーカーは，二重鎖 DNA のマーカーであるため，
RNA の鎖長を判定する物差しとしては使えないので注意すること。
ただし，光の強さ（白くみえる部分）はそこにある核酸の量を反映していると考えてよい。強い光，太いバンドはそれだけ核酸の量が多い。
★ 結果 ★
-吸光度測定による定量および純度測定
測定のために超純水で希釈（6倍希釈）したが，器械に表示された数値は，原液に対する値である。
1 班，3 班の「+++++」はバイオフォトメータの取説書によると「吸光度が高すぎる」というエラーであった。別の機器で再測定し，値を載せた。
このことと 1 班，3 班のRNA 抽出がうまくいったかどうかとは，別問題である。泳動量と電気泳動の結果も合わせてしっかり評価して欲しい。
| . | . | 値 | 再測定 | 発生段階 | 電気泳動量 |
| 1 班 | 濃度 (ug/uL) | +++++ | 1.5569 | 16 細胞期 | 1 uL |
| A260/A280 | ----- | 1.97 | |||
| 2 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.675 | . | 0.5 ug 計算 |
|
| A260/A280 | 1.04 | . | |||
| 3 班 | 濃度 (ug/uL) | +++++ | 0.824 | 胞胚期 （B） |
1 uL |
| A260/A280 | ----- | 1.87 | |||
| 4 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.489 | . | 0.5 ug 計算 |
|
| A260/A280 | 1.81 | . | |||
| 5 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.433 | . | 原腸胚期 （G） |
0.5 ug 計算 |
| A260/A280 | 1.64 | . | |||
| 6 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.394 | . | 0.5 ug 計算 |
|
| A260/A280 | 1.56 | . | |||
| 7 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.254 | . | プルテウス幼生 （P） |
0.5 ug 計算 |
| A260/A280 | 1.50 | . | |||
| 8 班 | 濃度 (ug/uL) | 0.152 | . | 0.5 ug 計算 |
|
| A260/A280 | 1.57 | . | |||
| . | . | . | . | . | . |
-アガロースゲル電気泳動
各グループの total RNA 水溶液をアガロースゲルで電気泳動した。M のレーンで泳動したマーカーは，二重鎖 DNA のマーカーであるため，
RNA の鎖長を判定する物差しとしては使えないので注意すること。
ただし，光の強さ（白くみえる部分）はそこにある核酸の量を反映していると考えてよい。強い光，太いバンドはそれだけ核酸の量が多い。
★ レポート作成のポイント
実験結果の説明として，上記の電気泳動写真および数値を使用し，抽出した RNA のクオリティチェックを自分たちでしてください。
自分たちの班の結果を中心に述べるのが基本ですが，他班の結果も材料にして，濃度と電気泳動像のつじつまが合っている
かどうかなど，考察してみてください。A260/A280 とは何なのか調べてみると深い考察ができるかもしれません。
★ 課題１
今回の実習でやったアガロースゲル電気泳動は，RNA を正しく鎖長ごとに分離できる方法ではありませんでした。
TAEバッファーにアガロース（1% w/v）を溶かし，固めたゲルを使い，TAEバッファー中で電気泳動しました。
この課題で，「正しい方法」を自学で理解してもらいます。RNA をゲル電気泳動で分離する正しい方法について，説明してください。
ただし，「○×○×法」のように単語で答えるのではなく，RNA の性質などについても触れながら，手順や使われる試薬などが
「何ための手順なのか？」「その試薬にどんな効果があるのか？」が分かるように，でもなるべく簡潔に記述してください。
2） 逆転写反応による cDNA 合成へ
3） RT-PCRへ
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